Создание биоинженерного биофильма для регенеративной медицины с использованием бактериального альгинатаНИР

Development of bioengineering biofilm for regenerative medicine using bacterial alginate

Соисполнители НИР

ФИЦ Биотехнологии РАН Соисполнитель

Источник финансирования НИР

грант РНФ

Этапы НИР

# Сроки Название
1 1 августа 2017 г.-31 декабря 2017 г. Получение бактериального алдьгината и исследование его свойств
Результаты этапа:
2 1 января 2018 г.-30 июня 2018 г. Получение бактериального алдьгината и исследование его свойств
Результаты этапа:
3 1 июля 2018 г.-30 июня 2019 г. Получение бактериального алдьгината и исследование его свойств
Результаты этапа: Конкретными научными результатами научно-исследовательской работы по этапу 2 "Разработка технологических основ создания биоинженерного биофильма на основе бактериальных альгинатов" (01.08.2018-30.06.2019 г.) является Промежуточный отчёт о НИР, включающий 12 разделов по числу пунктов Плана работ научного исследования Соглашения № 17-74-20104 от 01.08.2017 г. Далее по каждому из разделов будет приведено краткое описание Достигнутых конкретных научных результатов в отчетном периоде. 2.1.1. Описание методики инкапсулирования пробиотических бактерий в гидрогель на основе бактериальных альгинатов. Пробиотические бактерии L. plantarum 8P-A3 и B. longum MC-42 культивируют в 1% бактериальном альгинате (образец АЛГ_К3), смешанным с MRS-бульоном как основной питательной средой, как на полужидкой среде без перемешивания при 37°С в течение 96 часов. Полученный раствор альгината натрия, содержащий MRS-бульон и пробиотические бактерии, перемешивают в биоинкубаторе с перемешивающим элементом при 50 об/мин в течение 15 мин до достижения равномерного распределения бактериальной биомассы по объему среды, после чего гелируют путем добавления 50 мМ раствора хлорида кальция. Разработанный метод позволяет получать гидрогель бактериального альгината, содержащий в случае L. plantarum 8P-A3 - 2,5×107 КОЕ/мл бактерий, а в случае B. longum MC-42 - 3,4×106 КОЕ/мл бактерий. 2.1.2. Описание методики инкапсулирования в композитную полимерную конструкцию антибактериальных веществ. Были разработаны методы загрузки в композитную полимерную конструкцию антибактериальных веществ: антибиотика левофлоксацина и противобактериального терапевтического белка лизоцима для их пролонгированного высвобождения. Инкапсулирование низкомолекулярного антибактериального ЛВ, левофлоксацина, в композиционную полимерную конструкцию проводят путем его загрузки в полимерный материал подложки и микросфер на стадии их изготовления. На первой стадии левофлоксацин загружают в пористые подложки полимерной конструкции на стадии их изготовления при помощи модифицированного метода выщелачивания. Для этого смешивают растворы ПОБВ и левофлоксацина в хлороформе, для чего к 8 мл раствора ПОБВ в хлороформе в концентрации 24 мг/мл добавляют 0,1 мл раствора левофлоксацина в хлороформе в концентрации 200 мг/мл. Полученный совместный раствор ПОБВ и левофлоксацина в хлороформе смешивают с порошком бикарбоната аммония (с размером частиц соли в диапазоне 90-300 мкм в соотношении 10:1 по массе) и тщательно перемешивают шпателем. Смесь помещают в стеклянную чашку Петри диаметром 5 см и оставляют при комнатной температуре до полного испарения органического растворителя в течение 3-х часов. После этого форму помещают в горячую дистиллированную воду (60°С) до полного прекращения газообразования, промывают дистиллированной водой 5 раз и высушивают при 37°C в течение суток. На втором этапе загружают левофлоксацин в пористые микросферы конструкции на стадии их изготовления при помощи метода «водная фаза/масляная фаза/водная фаза» (W/O/W), с последующим вымыванием порообразователя. В качестве пороборазователя используют водный раствор карбоната аммония. К 20 мл хлороформенного раствора ПОБ в концентрации 42 мг/мл добавляют 1 мл раствора левофлоксацина в хлороформе в концентрации 102 мг/мл, после чего гомогенизируют с 6,6 мл 5%-го (вес/об.) водного раствора карбоната аммония. Полученный коллоид по каплям добавляют в 210 мл 1%-го (вес./об.) раствора поливинилового спирта при постоянном перемешивании на верхнеприводной мешалке при скорости 750 об/мин. После полного испарения хлороформа частицы отделяют от эмульгатора (ПВС) путем осаждения и промывки дистиллированной водой. Для полного выхода порообразователя, микросферы инкубируют в горячей дистиллированной воде (60°С). Эффективность загрузки определяют методом УФ-спектроскопии по остаточному содержанию левофлоксацина при растворении полученных подложки и микросфер в хлороформе, предварительно построив калибровочную кривую по раствору ЛВ в различных известных концентрациях в растворе ПОБВ против раствора ПОБВ в хлороформе без ЛВ по поглощения растворов при максимуме поглощения левофлоксацина при λ=287 нм. Инкапсулирование лизоцима проводят с использованием метода сорбции на пористой подложке и пористых микросферах за счет ионного взаимодействия катионного белка лизоцима со слабо отрицательно заряженной поверхностью ПОБ и ПОБВ, разработанного нами ранее. Для этого используют пористую подложку с уже нанесенными на нее микросферами. На первой стадии проводят обработку подложки с микросферами 133 мМ NaOH. После отмывки подложки с нанесенными на них микросферами проводят их ионизацию путем диализа против 0,125 фосфатно-солевого буфера. Для загрузки лизоцима в конструкцию сливают буферный раствор, а к подложкам с нанесенными на них микросферами добавляют 5 мл раствора лизоцима в концентрации 1,19 мг/мл, полученного после диализа против 0,125 фосфатно-солевого буфера. Инкубируют 1 час. при перемешивании на мультиротаторе при 15 об./мин при +4ºС. В результате была получена композиционная полимерная конструкция, содержащая в полимерном материале подложки и микросфер 1% (вес.) лизоцима. После чего проводят пропитку подложки с нанесенными на нее микросферами раствором альгината натрия и его гелирование in situ, т.е. получение самой конструкции. Для этой процедуры конструкцию на основе ПОБ/ПОБВ помещают в 1% раствор бактериального альгината натрия, а емкость с ней в эксикатор, где создавают отрицательное давление для вымещения воздуха из пор микросфер и подложки и замещения их раствором альгината. После чего к полученному раствору добавляют 0,1 мл 50 мМ раствора CaCl2 для гелирования альгината. 2.1.3. Описание модели повреждения стенки кишечника. Операции проводят на крысах линии Вистар весом 250-400 г. Проводят наркотизацию Золетилом 50 в дозе 10 мг/кг в сочетании с Рометаром в дозе 6 мг/кг внутримышечно. Повреждение кишечника моделируют на участки кишечника примерно на 1 см после его выхода из слепой кишки. После надреза кожи производят лапаротомию и выведение выбранного участка толстого кишечника из брюшной полости с его фиксацией при помощи двух зажимов Кохера, модифицированных нами при помощи обмотки медицинской ватой с формированием углублений на этом ватном валике на каждой из сторон для предотвращения повреждения серозно-мышечной ткани кишечника при непосредственном захвате. Повреждение толстого кишечника проводят хирургическими глазными ножницами по центру между двумя зажимами Кохера шириной в 3-4 мм. Перед непосредственной имплантацией в толстый кишечник полимерных конструкций проводят экспериментальное механико-химическое локальное повреждение слизистой кишечника при помощи ваты, обмотанной вокруг шпателя в месте разреза, смоченной в 1% растворе 2,4,6-тринитробензолсульфониевой кислоты в 50% этаноле. Разработанный метод позволяет имплантировать полимерные конструкции различной формы: трубки длиной 15-20 мм и диаметром в 5 мм, а также пластины-заплаты длиной 15-20 мм и шириной 5 мм. При наложении швов для закрытия поврежденного участка в толстом кишечнике используют модифицированный сквозной шов Ламбера, накладываемый крест на крест по 3 стежка. При завершении операции трубка или заплата фиксируется краевыми швами на стенку толстого кишечника, затем брюшную стенку и кожу закрывают поперечными швами. Все крысы получают жидкое углеводно-белковое питание, которое начинают вводить за 2 недели до операции. Через 3, 7 и 14 суток животных умервщляют путем перенаркотизации и проводят релапоротомию для получения биологического материала. Пробы для определения бактериального состава в кишечной микробиоте крыс отбирают из кала и путем соскоба со слизистой и замораживают при -80 ºС, а для взятия проб для гистологической оценки регенерации кишечной стенки вырезают участки стенки кишечника в области имплантации и фиксируют их в забуференном формалине. 2.1.4. Результаты исследования жизнеспособности и роста пробиотических бактерий в гидрогеле на основе бактериальных альгинатов; Пробиотические бактерии L. plantarum 8P-A3 и B. longum MC-42 равномерно растут и распределяются в толще гидрогеля, выраженной миграции бактерий из альгинатного гидрогеля не происходит. Гибели клеток не происходило, количество клеток увеличивается более чем в 11-15 раз за 96 часов культивирования. Значительной разницы в росте бактерий в водорослевом и бактериальном альгинате не наблюдалось. 1.1.5. Результаты исследования воздействия антибактериальных веществ на жизнеспособность пробиотических бактерий, инкапсулированных в гидрогель на основе бактериальных альгинатов; Пробиотические бактерии B. longum MC-42 были чувствительны ко всем используемым нами антибактериальным веществам: антибиотикам (левофлоксацину, пеннициллину, стрептомицину) и противобактериальному терапевтическому белку лизоцима, а L. plantarum 8P-A3 – только к антибиотикам (левофлоксацину, пеннициллину, стрептомицину), а к лизоциму оказались нечувствительны. Было показано, что как бактериальный, так и водорослевый альгинаты надежно защищают пробиотические бактерии от действия антибиотиков левофлоксацина, пеннициллина, стрептомицина и антибактериального белка лизоцима (для B. longum MC-42), т.к. подавления их роста не наблюдалось. 2.1.6. Результаты исследования механических свойств бактериального альгината, не содержащего и содержащего пробиотические бактерии; Исследование методом реометрии механических свойств гидрогелей из полученного бактериального альгината после культивирования в нем пробиотических бактерий показало, что после культивирования L. plantarum 8P-A3 в бактериалном альгинате комплексный модуль составил 0,76 кПа при 0,80 кПа в контроле, тогда как в водорослевом альгинате - 0,26 кПа при 0,52 кПа в контроле. Культивирование B. longum MC-42 практически не изменяет механические свойства водорослевого и бактериального альгинатного гидрогеля. 2.1.7. Результаты исследования воздействия пробиотических бактерий на физико-химические свойства бактериального альгината, их содержащего. Исследование с помощью методов вискозиметрии, ИК-спектроскопии, термогравиметрии методов молекулярной массы, термофизических свойств и гидрофильности гидрогелей из полученных бактериальных альгинатов после культивирования в них пробиотических бактерий показало, что культивирование бактерий приводит к изменению физико-химических свойств бактериального и водорослевого альгината. После культивирования L. plantarum 8P-A3 в бактериальном альгинате молярное содержание остатков гулуроновой кислоты составило 33 моль% при 40 моль% в контроле, молекулярная масса – 520 кДа при 570 кДа в контроле, потеря массы при нагреве – 46,2% при 42,9% в контроле, водопоглощение – на 364% при 393% в контроле. Физико-химические свойства бактериального альгината после культивирования в нем B. longum MC-42 практически не отличались от контроля. После культивирования L. plantarum 8P-A3 в водорослевом альгинате молярное содержание остатков гулуроновой кислоты составило 2 моль% (после культивирования B. longum MC-42 – 3 моль%) при 20 моль% в контроле, молекулярная масса – 270 кДа (после культивирования B. longum MC-42 – 410 кДа) при 680 кДа в контроле, потеря массы при нагреве – 61,1% (после культивирования B. longum MC-42 – 59,6%) при 40,7% в контроле, водопоглощение – на 108% (после культивирования B. longum MC-42 – 197%) при 230% в контроле. 2.1.8. Результаты исследования высвобождения антибактериальных веществ из композитной полимерной конструкции. Время полувысвобождения низкомолекулярного ЛВ, левофлоксацина, из композиционной полимерной конструкции составляет 5,9 сут., а время полувысвобождения терапевтического белка лизоцима из композиционной полимерной конструкции составляет 12,4 сут. Высвобождение как низкомолекулярного левофлоксацина, так и высокомолекулярного лизоцима происходит с заданной кинетикой по механизму диффузии. 2.1.9. Результаты исследования биосовместимости in vitro пористой подложки полимерной конструкции. Исследование биосовместимости in vitro пористой подложки полимерной конструкции на культуре мезенхимальных стволовых клеток (МСК) показало, что пористая подложка полимерной конструкции поддерживает стабильный долговременный рост МСК в течение 21 сут., тогда как на культуральном пластике рост клеток прекращался к 14 сут., а затем наблюдалось падение числа клеток. Число клеток на полимерной конструкции превышает количество клеток на культуральном пластике на 7-ой день культивирования в 5,0 раз, на 14-ый день – в 3,2 раза, на 21-ый день – в 6,8 раз. 2.1.10. Результаты исследования цитотоксичности полученного бактериального альгината. Исследование цитотоксичности полученного бактериального альгината на культуре клеток (фибробластов) in vitro показало, что гидрогель на основе коммерческого водорослевого альгината обладает выраженной цитотоксичностью, в его присутствии рост фибробластов подавлен в несколько раз. Бактериальные же альгинаты значительно превосходят водорослевый по этому показателю, но наблюдаются различия между свободным и капсулярным его видами. Свободный бактериальный альгинат обладал хотя и меньшей, чем водорослевый, но довольно выраженной цитотоксичностью на всех сроках культивирования клеток (от 83% до 58%), тогда как для капсулярного альгината небольшая цитотоксичность (78%) проявилась лишь на 3-ьи сутки культивирования, на других сроках она не была статистически достоверна. 2.2. Заявка на патент. Уведомление о создании РИД «Биоинженерная конструкция на основе бактериального альгината и пробиотических бактерий и способ ее получения» № 24-2019 от 08.04.2019 г. Уведомление о создании РИД приведено в Приложении 1 к Дополнительным материалам к Отчету за 2-ой этап. 2.3. Публикации в рецензируемых российских и зарубежных научных изданиях, индексируемых в базах данных «Сеть науки» (Web of Science) и «Скопус» (Scopus). 1) Akoulina E., Dudun A., Bonartsev A., Bonartseva G., Voinova V. Effect of bacterial alginate on growth of mesenchymal stem cells. International Journal of Polymeric Materials and Polymeric Biomaterials, 2018, 68(1-3), 115-118, doi: 10.1080/00914037.2018.1525730. Scopus (SJR = 0.489), WoS (IF 2.127). 2) Bonartsev A.P., Zharkova I.I., Voinova V.V., Kuznetsova E.S., Zhuikov V.A., Makhina T.K., Myshkina V.L., Potashnikova D.M., Chesnokova D.V., Khaydapova D.D., Bonartseva G.A., Shaitan K.V. Poly(3-hydroxybutyrate)/poly(ethylene glycol) scaffolds with different microstructure: the effect on growth of mesenchymal stem cells. 3 Biotech, 2018, 8, 328, doi: 10.1007/s13205-018-1350-8. Scopus (SJR = 0.511), WoS (IF 1.497). 3) Zhuikov V., Rusakov A., Useinov A., Akulina E., Voinova V. Biodegradation of poly(3-Hydroxybutyrate) and poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxy-4-methylvalerate) films by porcine pancreatic lipase. Key Engineering Materials, 2018, 779, 57-63, doi: 10.4028/www.scientific.net/KEM.779.57. Scopus (SJR = 0.18). 4) Бонарцев А.П., Бонарцева Г.А., Воинова В.В., Кирпичников М.П., Шайтан К.В. Лекарственные системы на основе поли-3-оксиалканоатов: их микро- и наноструктура. Вестник РГМУ (рубрика «Мнения», тематический номер «Наномедицина»), 2018, №6, 130-134 doi: 10.24075/vrgmu.2018.083. Более подробно материалы Отчета за 2-ой этап Проекта представлены в в файле с Дополнительными материалами к Отчету с полной его версией, содержащей рисунки, таблицы, полный список литературы на 102 стр.
4 30 июня 2019 г.-30 июня 2020 г. Разработка биоинженерного биофильма и исследование его эффективности для регенерации тканей стенки кишечника
Результаты этапа:

Прикрепленные к НИР результаты

Для прикрепления результата сначала выберете тип результата (статьи, книги, ...). После чего введите несколько символов в поле поиска прикрепляемого результата, затем выберете один из предложенных и нажмите кнопку "Добавить".